Article

가금 영양에서 천연 항산화제의 개발 및 적용

남근희1https://orcid.org/0009-0005-6815-9661, 장인석2,https://orcid.org/0000-0001-9021-8852
Geun-Hui Nam1https://orcid.org/0009-0005-6815-9661, In-Surk Jang2,https://orcid.org/0000-0001-9021-8852
Author Information & Copyright
1경상국립대학교 농업생명과학대학 동물생명융합학부 대학원생
2경상국립대학교 농업생명과학대학 동물생명융합학부 교수
1Graduate Student, Division of Animal Bioscience and Integrated Biotechnology, College of Agriculture and Life Science, Gyeongsang National University, Jinju 52727, Republic of Korea
2Professor, Division of Animal Bioscience and Integrated Biotechnology, College of Agriculture and Life Science, Gyeongsang National University, Jinju 52727, Republic of Korea
To whom correspondence should be addressed : ijang@gnu.ac.kr

© Copyright 2025, Korean Society of Poultry Science. This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited.

Received: Apr 03, 2025; Revised: Apr 18, 2025; Accepted: Apr 23, 2025

Published Online: Jun 30, 2025

ABSTRACT

Poultry are exposed to oxidative stress (OS) due to excessive reactive oxygen species (ROS) produced by various stressors, although they have significantly improved productivity for several decades. Therefore, antioxidant systems that eliminate excess ROS are important in poultry production. Various enzymatic and non-enzymatic antioxidant systems rapidly develop in poultry’s embryonic and growth stages in response to OS. Natural antioxidants, including vitamins, minerals, and phytochemicals, have been known to protect the body against ROS by promoting chelation, oxygen quencher, oxidase inhibition, or antioxidant enzymes. Vitamins A and E act as effective oxygen quenchers and chain-breaking oxidation inhibitors in the cellular tissues. Selenium plays a vital role in antioxidant activity as a component of Se-glutathione peroxidase. Copper and zinc also play key functions in the antioxidant system as components of Cu/Zn-superoxide dismutase. Among the phytochemicals, phenolic acids and flavonoids have high potential as dietary antioxidants in poultry. Essential oils, including thymol, have been successfully used in poultry diets. Carotenoids, such as lutein, xanthin, etc., are widely used to increase the quality of poultry products. Although some have been successfully used as dietary antioxidants, phytochemicals are not yet widely used due to the complexity of structure, lower bioavailability, etc. Advanced technologies such as emulsification, liposomes, and nanoparticles are being developed to increase the bioavailability of phytochemicals. In conclusion, more research is necessary to investigate the effects of dietary antioxidants on antioxidant and immune-related gene expression in poultry. The development and application of natural antioxidants is an important field for environmentally friendly poultry production.

Keywords: 천연 항산화제; 산화스트레스; 활성 산소; 가금 생산
Keywords: natural antioxidants; oxidative stress; reactive oxygen species; poultry production

서 론

지난 반세기 동안 가금 특히 닭은 성장, 육량과 산란율 등의 생산 효율이 눈부시게 향상되었다. 이러한 것은 육종 개량 및 사양관리 기술의 개선에 의한 것으로 가금 산업의 발달에 따른 동물성 식품의 공급으로 인류 보건에 크게 기여하고 있다. 한편 생산성 향상의 이면에는 육종 개량에 따른 대사성 질병 및 지구 온난화와 환경오염 등 사육 환경의 변화와 같은 내외적 요인들에 의해 가금의 건강 및 복지에 심각한 문제가 초래되고 있다(Surai, 2020; Alo et al., 2024).

가금의 건강에 미치는 가장 부정적 문제 중 하나는 내외적 스트레스에 의해 유발되는 체 조직의 산화 스트레스(oxidative stress)로서 이에 적절히 대응하지 못하는 것이다. 산화 스트레스는 활성산소(reactive oxygen species, ROS)에 의해 유발됨으로 이의 발생 기전의 연구와 항산화 방어 작용은 가금의 건강 유지에 매우 중요하다(Surai, 1999). 다양한 연구에서 체 조직의 항산화 방어 작용은 가금의 면역, 생존율 향상, 번식력 및 가금 생산물의 품질에 유의한 영향을 미치는 것으로 보고되었다(Surai, 2002; Mishra and Jha, 2019; Surai, 2020). 따라서 가금은 발생학적으로 배아 발달 및 성장 단계에서 산화 스트레스를 유발하는 ROS로부터 체 조직을 보호하는 다양한 항산화 시스템이 급격히 발달하였다(Surai et al., 1999). 또한 폭염 등 환경 스트레스 발생 시 vitamin C와 E와 같은 항산화제 급여는 가금의 항산화 방어작용에 유익한 도움을 준다(Jang et al., 2014b). 특히 생산성 위주의 육종 개량으로 가금의 근육 발달은 매우 증가하였으나, 장기 조직의 기능은 이에 비례적으로 발달하지 못해 신체 항상성 유지에 심각한 문제가 발생할 수 있어(Julian, 2005), 항산화제 급여는 더욱 중요하다. 항산화 영양소는 과도한 대사 작용, 환경 스트레스, 곰팡이 독소 등에 의해 생성되는 ROS로부터 산화 스트레스를 방지하는 중요한 수단이 될 수 있다(Surai and Kuklenko, 2000; Mishra and Jha, 2019). 최근 기후 변화에 따른 열 스트레스로 체온 조절 기능이 낮아 산화 스트레스가 더욱 심각한 가금에서 항산화제의 사용이 더욱 주목을 받고 있다. 따라서 친환경 사육 방법으로 산화 스트레스 완화에 따른 항상성 증가는 동물 건강과 복지를 증진하고 근육 조직의 안정성 증가로 가금 생산물의 품질을 향상할 수 있어 항산화제 사용량이 현저히 증가하고 있다(Oke et al., 2024; Oni et al., 2024).

따라서 본 고찰의 목적은 가금에서 체 조직의 항산화 방어체계에 대한 이해를 바탕으로 사료첨가제로써 활용할 수 있는 천연 항산화제들의 종류, 작용 기전 및 효과와 잠재적 적용 가능성에 대한 정보를 제공하고자 한다.

가금에서 항산화 방어 작용의 중요성

가금 사육과정에서 다양한 내외적 스트레스 요인들에 의해 체내 심각한 산화 스트레스가 발생할 수 있다(Fig. 1). 먼저 내적 산화 스트레스 요인들을 살펴보면, 체 조직에서 생성되는 ROS는 세포 신호전달 작용 등과 같은 긍정적 효과도 있지만, 과도하게 생성되면 세포 손상을 초래한다(Sies and Jones, 2020). 특히 비정상적 대사 작용으로 생성된 과도한 ROS는 DNA 돌연변이, 단백질 변성, 지질 과산화 등을 유발하는 것이 잘 알려져 있다(Mujahid et al., 2007). 세포막은 소수성과 친수성 부분으로 구성된 이중 지질 막 구조로 내생적으로 발생하는 superoxide, hydrogen peroxide, hydroxyl radicals, hydrogen peroxide, peroxyl radicals 등과 같은 ROS가 막 단백질 산화와 세포막의 손상을 유발한다(Fig. 2). 세포막 구성 성분의 불포화지방산 산화는 막 구조와 유동성 변화, 흡수성과 및 세포막 효소의 기능에도 큰 영향을 미친다(Surai, 2002).

kjps-52-2-55-g1
Fig. 1. Internal and external stress factors in the poultry production system. Modified from Surai & Fisinin (2016) and Carrasco et al. (2019).
Download Original Figure
kjps-52-2-55-g2
Fig. 2. The effects of ROS induced by oxidative stress on the celluar damage of body in poultry. Nrf2 (nuclear factor erythroid-2-related factor 2, NF-κB (nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells), SOD (superoxide dismutase), GPX (glutathione peroxidase), CAT (catalase), and HSPs (heat shock proteins).
Download Original Figure

지금까지 잘 알려진 사실은 체내 항상성 유지를 위한 항산화 작용은 동물의 연령, 품종, 성 등 유전적 요인 등에 따라 많은 차이가 있다(Fig. 1). 육계와 산란계는 각각 성장, 산란 능력 및 영양소 이용 효율 등 생산성 위주로 육종되어 대사 작용에 따른 산화 스트레스 유발 요인이 매우 높다(Soleimani et al., 2011). 특히 빠른 근육 성장 위주로 개량된 육계에서 고온 스트레스에 노출되면 산화 스트레스의 대응이 더욱 취약하다(Kpomasse et al., 2021). 또한 부화 발생 전후와 육성기에 대사 작용의 증가로 체내 산소 요구량 증가함으로 과도한 ROS가 생성되어 산화 스트레스가 더욱 심각한 것으로 보고되며(Surai, 1999; Julian, 2005), 이 시기에 체 조직의 항산화 방어 작용 또한 급격히 발달한다(Circu and Aw, 2012). 닭은 부화 전후 항산화 효소가 간 등 모든 조직에서 발달하며 어린 병아리도 각 장기에서 높은 수준의 항산화 효소가 발현된다(Tang et al., 2019; Kim et al., 2021). 또한 세균 등 외부 침입에 대응하기 위하여 면역 방어체계가 활성화 될 때도 ROS 생성이 급증하는 것으로 알려졌다(Schwarz, 1996). ROS 생성의 증가는 염증 발생을 촉진해 닭의 면역, 번식, 대사, 생산성 및 가금 생산물의 품질에 직접적인 영향을 미친다(Figs. 1 and 2).

가금 사육 시 필연적으로 발생하는 외적 스트레스는 사육환경 및 영양 요인으로 구분할 수 있다(Fig. 1). 사육환경 요인 중 폭염은 심각한 열 스트레스를 유발하고(Jang et al., 2014b), 소화기관에서 과량의 ROS 발생에 따른 염증으로 흡수 세포의 손상과 영양소 흡수율이 저하되어 가금의 생산성이 감소한다(Mishra and Jha, 2019). 고온 스트레스에서는 미토콘드리아 기능 장애로 생성된 과량의 ROS가 주요 장기에서 지질 과산화 작용을 유발하여 기능을 손상한다(Tan et al., 2010). 또한 고온 스트레스로 과도하게 생성된 ROS는 염증을 유발하여 면역력을 저하시켜 닭에서 질병에 쉽게 감염된다(Naidoo et al., 2008). 사육과정에서 병원성 세균 등의 감염 역시 가금에서 심각한 산화 스트레스를 유발한다(Oke et al., 2024). 원충(Eimeria acervulina)에 감염된 닭의 소화기관에서 산화 스트레스에 따른 지질 과산화 및 염증 작용으로 심각한 면역 저하가 발생하는 것으로 보고되었다(Naidoo et al., 2008; Mishra and Jha, 2019). 그 외 가금의 사육환경에서 부적절한 환기에 따른 NH4, CO2, 먼지 등 역시 체 조직에서 산화 스트레스를 유발하는 주요 요인으로 작용한다(Surai, 2002).

영양 요인으로 오염 사료에 존재하는 곰팡이 독소 및 유해 물질은 가금의 소화기관 및 장기에 치명적 손상을 초래할 수 있다. 많은 연구에서 aflatoxin, fumonisin 등과 같은 mycotoxin는 소장 상피세포의 구조적 손상을 유발하여 영양소 흡수, 미생물군 및 면역 작용에 심각한 손상이 발생한다고 보고하였다(Mishra and Jha, 2019; Surai, 2020). 산패 지방, 중금속 등과 같은 사료도 소장 점막 세포에서 산화 스트레스를 유발하여 흡수 세포의 기능 저하로 생산성을 감소시킨다(Surai, 2002; Mishra and Jha, 2019).

이처럼 가금에서 수많은 내외적 요인으로 발생하는 산화 스트레스는 영양소 이용과 대사 효율 저하, 장기의 기능 장애, 번식 저하 등과 같은 생산능력에 직간접적인 영향을 미친다. 산화 스트레스는 면역 저하에 따른 질병 발생과 깊은 연관이 있으므로 가금은 태아 발생 및 성장발육 단계에서 신체를 보호하는 항산화 방어 기전을 스스로 갖게 된다. 체 조직의 항산화 작용은 비효소적 항산화 물질과 항산화 효소에 의해 이루어짐으로(Suari, 2002), 심각한 스트레스에 노출되는 시기와 환경에서 항산화제 급여는 가금의 면역력에 매우 중요하게 작용한다.

1. 효소학적 항산화 방어기전

체 조직에 존재하는 항산화 효소들은 superoxide dismutase(SOD), glutathione peroxidase(GPX), catalase(CAT), glutathione reductase(GR) 및 glutathione S-transferase(GST) 등이다(Fig. 3). 생리적 대사 과정에서 O2가 주요 ROS로 발생되며 SOD는 O2를 H2O2로 전환하는 효소로서 체 조직에 널리 발현된다(Suari, 2002). GPX는 SOD에 의해 생성된 H2O2를 H2O로 전환하는 효소로서 체내 발생한 과산화물을 제거하는 기능을 한다(Surai et al., 2018). 가금에서 Se-dependent GPX는 Se와 함께 항산화 방어 작용에 중요한 역할을 담당하는 것으로 알려져 있다(Surai and Kochish, 2019). CAT 역시 SOD에 의해 생성된 과산화수소 분자를 H2O와 O2로 전환하는 효소로서 탈수소 반응으로 ROS를 제거한다(Aebi, 1984). GR은 NADPH와 함께 산화형 glutathione을 환원형으로 전환하여 산화 스트레스 방어 기전이 원활하게 진행되도록 도와준다(Couto et al., 2016). GST는 산화 스트레스로 발생한 대사산물을 제거하는 항산화 작용과 비극성 독성물질을 해독하는 역할을 동시에 수행하는 이물질(xenobiotics) 대사 효소이다(Hayes et al., 2005).

kjps-52-2-55-g3
Fig. 3. The action mode of dietary and cellular antioxidant defense system in the body of poultry. SOD (superoxide dismutase), GR (glutathione peroxidase), CAT (catalase). GSH (reduced glutathione), and GSSG (glutathione disulfide).
Download Original Figure

항산화 계열의 효소들은 체 조직 분화가 왕성한 가금의 배아 발생단계부터 급격하게 발현된다(Surai, 1999; Yigit et al., 2014; Yang et al., 2018). 부화 시 고온, 고습도 및 고 CO2 농도로 발육 환경 스트레스가 매우 크고 발생 단계(19일령)에서 불포화지방산 함량이 높아 산화 스트레스가 가장 높은 것으로 알려져 있다(Surai, 2002; Jadhav and Kengar, 2016). Yigit et al.(2014)은 SOD는 산화 스트레스에 대응하기 위해 배아 발생 11일째 최대로 발현되며 항산화 작용이 배아단계에서 급격히 발달한다고 보고하였다. 항산화 효소들은 가금의 부화 단계에서 간, 심장 및 신장 등 대사 작용이 활발한 장기에서 SOD와 GPX 수준이 높게 유지된다(Surai, 1999; Tang et al., 2019; Kim et al., 2021). 또한 부화 후 1주 동안 급격한 성장기에 고수준의 ROS가 생성되므로 소화기관에서 SOD 발현이 급격히 증가하는 것으로 보고되었다(Tang et al., 2019). 육계는 대사 작용에 따른 과도한 ROS 생성으로 대사성 질병의 발생이 급격히 증가함으로(Geng et al., 2004), 2~6주령 동안 주령이 증가할수록 ROS에 따른 산화 스트레스로 심장 조직에서 지질 과산화도가 현저히 증가하는 것으로 나타났다(Milinkovic-Tur et al., 2009). 본 연구팀에서도 White Leghorn과 한국 재래 닭에서 부화 후부터 성장이 빠른 육추기에 간 조직의 SOD, GPX 및 GST 활성도가 높게 유지된다는 사실을 관찰하였다(Kim et al., 2021; Nam et al., 2024).

2. 비효소적 항산화 방어기전

체내 합성 또는 영양소 급여에 의해 증가하는 비효소적 항산화 물질 역시 산화 물질과 ROS를 소거하여 산화 스트레스로부터 신체를 방어하는 중요한 역할을 한다. 체 조직의 여러 종류의 단백질, 비타민, 광물질, coenzyme Q10(CoQ10) 등이 항산화제로서 작용을 하는데 Table 1Fig. 3에 제시한 바와 같다(Surai, 2002).

Table 1. Major bioactive antioxidant nutrients and chemical compounds found in the body of poultry and dietary components
Item Sites of action Function
Vitamins Vitamin A Membranes, tissues Converts O2-, OH and lipid peroxyl radicals to less reactive compounds
Vitamin E Membranes, extracellular fluid Scavenges O2- interacts directly with peroxyl radicals (chain-breaking action)
Vitamin C Intra- & extra-fluid, tissues Interacts with O2-, OH. Neutralizes ROS release from leukocytes
Minerals Se Various tissues Blocks lipid peroxidation as a key constituent of GPX
Zn Various tissues Blocks lipid peroxidation as a key constituent of SOD
Cu Various tissues A component of SOD, an enzyme that breaks down harmful oxygen free radicals
Nitrogen compound Glutathione Intracellular fluid and tissues Interacts with O2-, OH, and lipid hydroperoxides, and serves as substrate for GSH recycling enzymes
Albumin Blood Help neutralize free radicals and protect against oxidative stress
Uric acid Blood and urine Increase plasma antioxidant capacity and reduce oxidative stress
Metallothionein Whole tissues Prevent Fe, Cu and other metals from catalyzing oxidation reactions (chelators)
Others CoQ10 Mitochondria in tissues Help reduce oxidative stress and protect organelles from damage caused by ROS
α-Lipoic acid Cellular tissues Neutralize ROS and reduce oxidative stress
PUFA (ω-3) Cellular membrane Increase antioxidant activity by reducing oxidative stress and produce antioxidant enzymes
Download Excel Table

비효소계 항산화 물질로서 먼저 혈액에 존재하는 albumin 및 uric acid 등 질소화합물이 체 조직에서 총 항산화력의 약 70%를 담당한다고 보고되었다(Park and Kweon, 2013). 금속 킬레이트 단백질로서 albumin은 Cu++에 의한 지질 과산화와 수산기 형성을 억제하여 산화 작용으로부터 신체를 보호한다(Halliwell and Gutteridge, 1990). Ferritin, ceruoplasmin, metallothionenin 등과 같은 체 단백질도 chelators로서 Fe와 Cu 이온 등과 결합하여 항산화 방어 작용을 한다(Surai, 2002). Cystein, glycine 및 glutamic acid로 구성된 glutathione은 체내 항산화 방어체계의 중요한 역할을 하는 peptide로서 ROS, 지질 과산화물로부터 세포 손상을 방지한다(Surai, 2020). 특히 환원형 glutathione은 H2O2 촉매작용에 관여하는 GPX에 작용하여 peroxides를 제거하는 중요한 항산화 펩타이드로 잘 알려져 있다.

α-Tocopherol은 강력한 항산화제로서 세포막에서 chain-breaking 작용을 하는 지용성 비타민이다(Panda and Cherian, 2014). Vitamin A와 전구체로서 β-carotene(식물의 색소)은 단일 oxygen quencher 역할을 하는 항산화 비타민이다(Livrea et al., 1996). 수용성 vitamin C는 세포 내외액에서 직접 유해산소기를 제거하는 작용에 관여한다(Zheng et al., 2024). 이들 비타민은 대부분 사료를 통해 체 조직에 공급됨으로 항산화 vitamin 부분에서 상세히 기술하였다.

Uniquionine 계열로서 Coenzyme Q10(CoQ10)은 지용성 비타민처럼 세포의 미토콘드리아 전자전달계의 산화적 인산화 작용에 관여하여 ATP를 생성하는 중요한 역할을 한다(Acosta et al., 2016). 가금에서 대사 작용이 활발한 간, 심장 등의 미토콘드리아에 CoQ10이 다량 존재하며 에너지 대사로 ROS가 과다 생성 시 산화-환원(redox) 반응에 의한 항산화 작용에 관여한다(Quiles et al., 2005; Moon and Jang, 2022). CoQ10의 항산화 작용은 체 조직에서 비타민 C나 E보다도 항산화력이 강력한 것으로 보고되었다(James et al., 2004). CoQ10 급여 시 산란계에서 혈액, 간, 근육의 CoQ10이 현저히 증가하고(Krizman et al., 2013), 육계에서는 복수증 발생이 감소하는데 이는 심장과 폐 조직의 미토콘드리아 대사 과정에서 CoQ10이 ROS를 효과적으로 억제하였기 때문이라고 알려져 있다(Geng et al., 2004).

항산화 사료첨가제의 종류 및 효과

최근 축산업에서 동물의 건강과 동물성 식품의 품질 향상을 위해 사용하는 항산화제들은 Fig. 3에 나타낸 것처럼 비타민, 무기물, 식물 추출물(phytochemicals), 불포화지방산, 아미노산 등 다양한 소재들이 주목을 받고 있다(Jeon et al., 2019; Papadopouos et al., 2019; Oke et al., 2024). 항산화제는 체 조직의 항산화, 면역 및 번식 능력 등의 생리적 작용에 긍정적인 영향을 미치며 지방산의 산패 방지로 사료와 동물성 식품의 품질 유지에도 중요한 기능을 한다(Surai, 2002). 현재 사료 첨가용 항산화제는 BHT(butylated hydroxytoluene), BHA(butylated hydroxyanisole), exthoxyquin 등으로 주로 합성 물질이 이용된다(Baszczyk et al., 2013). 닭 사료에서 페놀계 합성 항산화제로서 BHT와 BHA는 150 ppm 수준이 허용되고 있지만(FEEDAP, 2018), 이들 물질의 항산화 효과는 우수하지만, 허용 수준 이상 시 산화 촉진, 발암성 등으로 안전성 문제가 우려된다(Xu et al., 2021).

가금 생산과정에서 동물성 식품의 안전성, 기능성 및 친환경 사육 방법은 시대적 과제로서 소비자와 생산자 모두를 만족시킬 수 있는 천연 항산화제 개발과 이용 분야는 관심이 매우 높다. 항산화 생리활성 천연 사료첨가제로 이용이 가능한 소재는 Tables 1, 2, and 3에 각각 제시하였고 그중 가장 중요한 비타민, 무기물 및 식물 소재 항산화제의 종류, 효과와 잠재적 이용 가능성에 대하여 고찰하였다.

Table 2. Major chemical compounds of dietary polyphenolic antioxidants1
Dietary polyphenols classes Subclasses Compounds Plant sources
Flavonoids Flavanol Catechin, epicatechine, gallo-cachechin, epiballocatechin (ECG), epicathechin-3 gallate (EGC) Apricot, apple, cocoa, red wine, tea, plum, cherry
Anthocyanidins Cyanidin, malvidin, petunidin Grapes, berries (black, blue), cherries, eggplant
Flavanone Naringenin, eridictyol, prunin Grapefruit, orange, lemon
Flavonol Kaempferol, quercetin, rutin Green tea, onion, brococoli, kale, leek, asparagus
Isoflavone Diadzein, genistein Soybean, legumes, chickpea
Flavone Apigenin, luteolin Cerely, parsley, carrot
Chalcone Naringenin, chalcone Ginger, mulberry, apple, soybean
Phenolic acid Hydroxybenxoic acid Gallic acid Gallnut, tea
Protocatechuic acid Salvia, onion
Hydroxycinnamic acid Chlorogenic acid Eucommia ulmoides
Ferulic acid Ferula asafoetida
Caffeic acid Coffee, hawthom
Stilbenes Resveratrol Grape
Lignan Secolariciresinol Linseed, oat
Tannins Condensed tannins Procyanidins Bluberry
Hydrolyzed tannins Gallotannins Cranberry, mango
Ellagitannins Pomegranate
Others Curcuminoids a phenolic monoterpenoid derivative Curcumin
Thymol Oregano, thyme, pepperwort, wild bergamot, marjoram, and dittany of crete
Carvacrol Oregano, thyme, pepperwort, wild bergamot, marjoram, and dittany of crete

1 Modified from the Shen et al. (2022) and Li et al. (2023).

Download Excel Table
Table 3. Major chemical compounds of dietary carotenoid antioxidants1
Carotenoids Effects Plant sources
α-Carotene Carotenoid that acts as a precursor to vitamin A and has antioxidant and immune properties. Carrots, red pepper, pumpkin, corn, palm oil, etc.
β-Carotene Carotenoid that acts as a precursor to vitamin A and has antioxidant and immune properties. Apricot, carrots, lettuce, spinach, cerely, broccoli, red pepper, cabbage, blueberry, parsley, orange fruits, etc.
β-Crytoxanthin Carotenoid that plays many roles in an antioxidant, a precursor to vitamin A, and a potential chemopreventive agent Orange, tangerine, peach, squash, persimmon, red pepper, etc.
Lutein + zeaxanthin Biological properties including antioxidation and anti-inflammation. In addition, these may be protective against eye disease Egg yolk, brococoli, kale, parsley, carrots, leek, oregano, beets, persimmon, etc.
Lycopene A powerful antioxidant with many health benefits, including sun protection, improved heart health and a lower risk of certain types of cancer Tomato, red papaya, red guava, watermelon, etc.
Phytoene Plays a role in antioxidant and anti-inflammatory actions, and may protect against certain cancers Tomato, carrot, apricot, citrus, grapefruit, watermelon, papaya, red pepper, mandarin, etc.
Phytofluene Many potential health benefits, including antioxidant, anti-inflammatory, and anti-cancer properties Tomato, carrot, apricot, citrus, grape fruit, peach, red pepper, water melon, etc.
Download Excel Table
1. Vitamin 계열의 항산화제 작용

Table 1에 나타낸 바와 같이 항산화 비타민 A는 매우 효과적인 단일 oxygen quencher로서 체 조직에서 산화 물질 소거력을 가지고 있다(Livera et al., 1996). 가금에서 비타민 A 전구체로서 β-carotene은 소장 및 간에서 비타민 A로 전환되어 간, 난황 등에 다량 축적되어 항산화 및 면역 작용으로 오래전부터 주목을 받고 있다(Livrea et al., 1996; Surai and Kuklenko, 2000). β-Carotene은 식물 색소 성분으로 노란색, 주황색, 빨간색 등의 천연 항산화제로서 식물성 항산화제 부분에서 상세하게 설명하였다. Vitamin E(α-tocopherol)는 세포막에서 가장 효과적인 chain-breaking 산화 억제제로서 가금의 체 조직에서 산화-환원 균형 유지로 산화 스트레스를 방지하며(Fig. 4), 각종 염증 관련 유전자 및 전사 인자 조절, 번식 기능 및 동물성 식품의 품질 보존 작용이 널리 보고되었다(Surai, 1999; Gao et al., 2010). Vitamin C는 수용성으로 세포에서 ROS 소거 작용에 관여하는 항산화제로 vitamin E와 상호작용을 통해 불안정한 화합물이 ROS가 되는 연쇄반응을 억제한다(Zheng et al., 2024). 닭의 간 조직에서 비타민 C는 ROS와 반응하여 안정화하며 환원형 glutathione의 재생에도 관여한다(Laudicina and Marnett, 1990). Jang et al.(2014b)는 vitamin C는 고온기에 닭의 체 조직에서 항산화 작용과 함께 heat shock protein (HSP)과 친염증 cytokine 발현을 억제하여 열 스트레스를 완화하는 것으로 보고하였다. 항산화 비타민들은 체 조직에서 유해 전자와 반응하는 비타민 C와 유해산소에 수소이온을 공여하는 비타민 E의 공동 작용에 의한 부가적 상승효과가 알려져 있다(Trabera and Stevens, 2011). 많은 연구에서 vitamin C and E 급여는 장기 및 근육 조직에서 지질 과산화 억제 작용(Panda and Cherian, 2014)과 ROS를 소거하여 NF-kB 전자 인자를 발현시켜 염증 발생도 억제하는 것으로 보고하였다(Zhang et al., 2023). 따라서 이들 항산화 계열의 비타민은 가금 사육 시 발생할 수 있는 산화 스트레스를 방지하여 면역 증강과 함께 근육의 품질을 유지하여 고품질 동물성 식품 생산에도 활용할 수 있다. 또한 항산화 비타민 함유량이 높은 달걀 등과 같은 고부가 가금 생산물에도 적용될 수 있다.

kjps-52-2-55-g4
Fig. 4. Chain breaking antioxidant by vitamin E followed by action of GPX in celluar membranes; LH (lipid molecules), R* (free radical), LOO* (peroxylradical), LOOH (oxidized lipid), LOH (lipid alcohol), GPX (glutathione peroxidase), GR (glutathione reductase), and CAT (catalase).
Download Original Figure
2. Mineral(무기물) 계열의 항산화 작용

항산화 기능 무기물들은 3종류가 알려져 있는데(Table 1), 그중 셀레늄(Se)은 항산화 효소로서 Se 함유 selenocysteine 계열의 GPX 구성 성분이다(Surai, 2000). 가금에서 Se 요구량은 소량이지만 부족할 경우 항산화 작용의 실패로 동물의 건강에 치명적 문제를 유발할 수 있다. 부화 직후 병아리의 간 조직에서 Se-GPX는 항산화 작용의 61%를 담당하는 중요한 효소로서 종계에게 Se 급여가 특별히 중요하다고 알려져 있다(Surai, 2002). 부화 시에는 난황에 축적된 vitamin E가 항산화 작용에 중요한 역할을 하지만, 부화 후에는 Se-GPX가 가장 중요한 역할을 함으로써 Se 보충 급여는 필수적이다(Surai, 2002). Surai(2000)는 종계 사료에 유기태 0.2~0.4 ppm Se 급여 시 부화율 증가와 부화 후 병아리에서 ROS를 소거하는 충분한 방어력이 형성된다고 보고하였다. 또한 Se는 부화기, 병아리 및 성계 등 닭의 모든 생활사에서 항산화 작용에 중요함으로 지속적인 Se 급여가 필요하다(Surai and Kochish, 2019). Zhang et al.(2012) 역시 닭에서 Se 결핍 시 산화 스트레스로 면역 기관의 발육 억제로 면역력이 감소하는 것으로 보고하였다.

아연(Zn)은 체 조직에서 300여종 이상의 효소들과 metalloenzyme에 필수 무기물로서, 생체 단백질 구조 및 촉매작용으로 가금의 대사 작용에 중요한 기능을 담당한다(Prasad, 2014). 닭에서 아연 요구량은 40 ppm(NRC, 1994)으로 무기태(ZnO, ZnSO4 등) 및 유기태 형태로 급여하고 있다(Huang et al., 2007; He et al., 2019). Zn은 산화 방어 기능에 가장 중요한 CuZn-SOD 구성 성분으로, 세포막이 O2에 의해 산화되는 것을 방지하여 ROS에 의한 DNA 손상 방지, DNA 회복 기전, 세포분화 및 세포사로부터 세포를 보호하는 항산화 기능이 보고되었다(Song et al., 2009; Prasad, 2014). Bun et al.(2011)은 육계에 유기태 아연을 농도별(20, 40 및 60 ppm)로 급여한 결과, 생산성에는 영향이 없었지만 간 조직에서 SOD 활성도 증가로 지질 과산화도가 감소하여 닭에서 산화 스트레스가 현저히 감소하였다고 하였다. 본 연구팀에서도 한국 재래 닭에 Zn-methionine(50 ppm)을 보충 급여한 결과 소장과 간에서 GST 항산화 효소의 활성도가 증가하였다(Jeon et al., 2019). 특히 높은 환경 스트레스(밀사, 감염, 폭염 등)에서 고수준(120~150 ppm 수준)의 아연 급여는 면역력을 증강하였다는 연구가 보고되었다(Abd El-Wahab et al., 2013; Navidshad et al., 2016).

구리(Cu) 또한 metalloenzymes의 구성 성분으로 항산화 효소 Cu/Zn-SOD의 구성 성분이다. Ognik et al.(2018)은 육계에서 나노 입자의 Cu 12 mg 6주간 급여한 결과, NRC 요구량 54% 이하의 Cu를 섭취한 닭에 비해 항산화력은 향상하고 지질과산화도가 현저히 감소하였다고 보고하였다. 최근 연구에서는 나노 Cu의 급여 시 육계의 성장, 항산화력(glutathione, total antioxidant capacity, SOD) 및 면역력이 현저히 증가하는 긍정적인 효과가 발표되었다(Al-Ruwad et al., 2024).

따라서 Se, Zn 및 Cu 등은 각각 항산화 효소의 구성 성분으로 체 조직에서 직간접인 항산화 작용에 중요한 역할을 하며 내외적 스트레스가 많이 발생하는 시기와 환경에서 적절히 공급하면 가금의 항상성 유지에 매우 유익할 것으로 생각한다.

3. 식물성 화합물(Phytochemicals) 항산화제 작용

식물 화합물(phytochemicals) 항산화 물질로서 flavonoids를 포함한 다양한 polyphenol 계열과 β-carotene 등과 같은 carotenoids 계열에 관한 많은 연구가 진행되어 Tables 23Fig. 5에 나타낸 바와 같이 항산화, 항염증, 생산성 등 다양한 긍정적 효과가 있음이 보고되었다(Goliomytis et al., 2014; Farahat et al., 2017; Ghosh et al., 2020). 특히 천연 생리활성 물질(phytobiotics) 중 polyphenol 화합물은 ROS 소거력이 우수한 화합물로서 합성 페놀 항산화제와 유사한 항산화 활성을 나타내는 것으로 알려져 있다(Farahat et al., 2017). Polyphenol 함량이 높은 베리, 허브, 녹차 등에 함유된 성분이 가금에서 항산화 사료첨가제로서 응용 가능성이 높은 것으로 많이 보고되었다(Surai, 2002; Seomoon and Jang, 2022; Li et al., 2023). Polyphenol 구조 화합물을 가진 식물은 콩과식물, 허브, 곡류 등 다양하며, Table 2에 제시한 것처럼 페놀계 화합물은 여러 종류가 있지만 phenolic acids와 flavonoids 계열 등 2종류가 항산화제로서 가장 주목을 받고 있다(Li et al., 2023). Phenolic acid는 gallic acid, caffeic acids 등과 같은 종류들이 있으며, flavonoids는 catechin, genistein, anthocyanin, quercetin 등이 이에 속한다(Li et al., 2023). 여러 polyphenol 성분 중에서 flavonoids 계열이 항산화 작용 측면에서 가장 많은 연구가 수행되고 있으며 화학 구조에 따라 flavonols, flavones, isoflavones, anthocyanidins, flavanones, flavanols, and chalcones 등 7종류(Table 2)로 분류된다(Shen et al., 2022). Anthocyanin은 항산화 능력이 비타민 C와 E와 비교해 각각 50배 및 20배가 강한 것으로(Shi et al., 2003), 포도 성분(proanthocyanin)을 닭에게 급여 시 소화 장기와 근육에서 발생하는 ROS를 소거하여 지질 과산화도가 감소한다는 연구 결과가 발표되었다(Jang et al., 2007b; Farahat et al., 2017). Flavonol의 일종인 anthocyanin, quercetin 등의 식물 추출물 역시 닭에게 급여 시 위장관과 근육의 지질과산화도를 감소시키고 닭고기의 저장 기간을 증가시킬 수 있는 천연 항산화제로서 작용도 보고되었다(Goliomytis et al., 2014; Ghosh et al., 2020). Flavanol 성분 중 녹차에 존재하는 catechin, 콩에 함유된 isoflavone 계열의 genistein 등과 같은 flavonoid 역시 국내외에 많은 연구가 진행되어 항산화 소재로써 사용 기능성이 매우 높은 것으로 알려져 있다(Kim et al., 2010; Kamboh et al., 2013; Farahat et al., 2016). 포도에 함유된 resveratrol을 항산화제로써 급여 시(400 mg/kg) 체 조직과 난황에서 항산화력이 증가하고 가금산물의 품질이 개선되는 것으로 보고되었다(Sahin et al., 2010; Meng et al., 2023).

kjps-52-2-55-g5
Fig. 5. The action modes of dietary phytochemicals on antioxidant, immunity and performance in poultry production. Nrf2 (nuclear factor erythroid-2-related factor 2, NF-κB (nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells, IL-6 (interleukin-6), IL-1β (interleukin-1 beta), SOD (superoxide dismutas), GPX (glutathione peroxidase), and CAT (catalase).
Download Original Figure

허브 식물 등에 주로 함유된 thymol과 carvacrol 등의 phenol 화합물도 동물 세포막의 불포화지방산의 산화를 효과적으로 억제하는 것으로 보고되었다(Cowan, 1999). 특히 thymol과 carvacrol 등을 함유한 생리활성 오일(essential oils, EO)은 상업적으로 개발된 사료첨가제로서 육계에서 근육의 지질 과산화를 억제하는 항산화 및 항균 작용으로 가금 산업에서 성공적으로 사용되고 있다(Jang et al., 2007a; Kirkpinar et al., 2014; Zhang et al., 2021).

이처럼 많은 polyphenol 계열의 성분은 가금에서 ROS 소거력, 금속 이온과 결합은 킬레이트화, 항산화 효소 활성도 증가 또는 산화 효소 및 nitric acid 생성을 억제하는 등 여러 가지 방법으로 항산화 작용을 나타낸다(Shen et al., 2022). 따라서 체 조직에서 ROS와 결합하여 안정화할 수 있는 화학 구조를 가진 polyphenol 성분은 항산화제 소재로서 가금 산업에 적용 가능성이 매우 크다.

지금까지 식물에서 600 여종의 carotenoids가 발견되었는데, 40 여종이 식품에 사용되어 인체 조직에서 20여 종이 검출되었다(Jones and Porter, 1999). Table 3에 제시한 것처럼 영양학적으로 중요하게 많이 연구하고 있는 carotenoids 성분은 α-carotene, β-carotene, lutein, zeaxanthin, lycopene, β-crytoxanthin 등 6종류로서 체 조직에서 항산화 작용을 나타낸다(Gebregziabher et al., 2023). α-Carotene, β-carotene 및 β-crytoxanthin 등 3종류는 비타민 A 전구체로 높은 항산화력을 나타낸다(Burri et al., 2016). Carotenoids 계열의 성분은 체 조직에서 발색되는 공역 이중결합(conjugated double bonds)의 구조로서 유해 ROS를 소거하는 항산화력을 나타낸다(Maurya et al., 2020). 특히 β-carotene 및 astaxantin 등은 인체에서 암 발생을 억제하는 강력한 항산화력을 나타낼 뿐만 아니라 번식과 면역 증강 등 여러 가지 생리활성 기능을 보인다(Gebregziabher et al., 2023). 특히 가금 생산물의 색도는 제품의 신선도와 영양가의 외관 평가 척도로서 선명한 색상을 나타낼수록 소비자의 상품 구매도가 높다. 따라서 사료첨가제로서 xanthophylls 계열은 난황, 계육 및 정강이 피부 착색제 용도와 함께 항산화 작용을 통해 가금 생산물의 품질을 높이는 목적으로 이용되고 있다(Maoka, 2019). 특히 xanthophyll 계열 중 lutein과 zeaxanthin은 달걀의 난황에 다량 함유된 항산화 물질로서 인간의 노화에 따른 황반변성을 예방하여 눈 건강을 유지하는 데 중요하다고 잘 알려져 있다(Berendschot et al., 2000). Lutein은 세포막에서 단일항 상태의 산소(singlet oxygen)와 peroxyl radicals를 소거하는 항산화 물질로서 체내 건강 유지를 위한 우수한 항산화력을 나타낸다(Li et al., 2010). 동물의 체 조직에서 중요한 역할을 하는 lutein은 체 합성이 되지 않아 반드시 사료를 통해 급여하여야 한다. 여러 연구 결과 닭에게 β-carotene, lutein 또는 zeaxanthin 급여 시 난황에 유의하게 축적되고 체 조직에서 항산화 작용이 현저히 개선되는 것으로 보고되었다(Jang et al., 2014a; Papadopoulos et al., 2019; Yao et al., 2023).

또한 flavonoids와 carotenoids 종류 이외 강황에 함유된 curcumin도 항산화 작용을 나타내며 가금의 사료첨가제로 연구되었다. 강황은 생리 활성이 강한 노란색 색소 성분인 커큐민(curcumin)을 함유하고 있는데, 가금의 체내에서 항산화 효소의 생성을 자극해 ROS 제거와 항염증 기능이 있는 것으로 보고되었다(Yadav et al., 2020). 산란계에서 curcumin 급여 시 여름철 사육 환경에서 강한 항산화력으로 열 스트레스로부터 발생하는 염증을 감소하여 면역 작용을 증가하는 것으로 보고되었다(Nawab et al., 2019).

지금까지 수십여 년 동안 식물성 천연 항산화 사료첨가제 개발에 관한 많은 연구가 진행되어, 일부는 기능성 사료첨가제로서 성공적으로 개발되었다. 그러나 식물성 계열의 화합물이 항산화 및 항염증 작용을 나타내는 천연물 소재로서 보고되고 있지만, 실질적으로 가금 산업에서 널리 사용하기위해서는 극복해야 할 여러 문제가 있다. 식물성 생리활성 성분은 in vitro 에서는 높은 항산화력이 증명되었지만, in vivo에서는 glycoside 결합에 따른 물질 용해도가 낮아 생체 이용률이 낮고, 첨가 용량과 화학적 안정성 등에 따라 항산화력의 결과가 일정하게 나타나지 않는 경우가 많이 보고되고 있다(Teng and Chen, 2019; Hu et al., 2023). 이러한 이유로서 식물성 phytochemicals의 생체 이용률은 식물 구조(matrix) 복잡성, 낮은 용해도, 다른 구성 성분과의 상호작용 등 여러 요인에 의해 영향을 받기 때문이다(Mamatha and Baskaran, 2011). Surai(2020)은 phytochemical 성분은 동물의 위장관에서 용해도가 낮고 소장 흡수 세포에서 수동 확산으로 흡수되어 생체 이용성이 매우 적어 체 조직에서는 소량의 성분이 생리적 활성 형태로 존재한다고 보고하였다. 이러한 문제를 해결하기 위하여 phytochemical의 흡수율을 높일 수 있는 기술의 개발이 필요한데, 화학적 물리적 구조 변화, 캡슐화, 유화, 리포솜, 나노 입자로 제조하면 효과적으로 흡수될 수 있는 것으로 알려져 있다(Ulit’ko et al., 2017; Hu et al., 2023). 특히 리포솜 형태로 급여하면 가금의 소화기관에서 2차 대사산물로 전환되는 것을 방지할 수 있어 효과적인 항산화 작용할 수 있는 방법으로 주목받고 있다(Ulit’ko et al., 2017). 또한 소장에서 흡수율 증가를 위해 유화 처리를 하면 효과가 매우 높다는 연구 결과가 보고되었다(Boonlao et al., 2022). 계면활성제로서 phospholipid 처리, 나노 입자화 등과 같은 기술적 방법은 carotenoid의 세포막 흡수율을 증가시킬 수 있다(Marsiddaiah and Baskararan, 2009; Molteni et al., 2022).

또 다른 문제로서 가금에서 항산화 생리 활성을 나타내는 최적의 용량 및 농도의 결정에 어려움이 있다. In vitro 시스템을 통한 phytochemical의 효과 연구에서는 높은 활성도를 나타내지만, in vivo에서는 이들 각 성분의 체내 흡수율과 2차 대사 과정과 밀접한 관련이 있어 명확한 결과를 얻기가 어렵다. 따라서 사료첨가제로서 개발하기 위해서는 생체에서 항산화 효과를 나타낼 수 있는 화학적 구조 형태 유지와 더불어 최적의 첨가 용량 수준에 관한 연구가 중요하다(Hu et al., 2023). 많은 종류의 식물성 항산화 성분들이 최적의 수준에서 항산화 효소(nuclear factor erythroid-2-related factor 2; Nrf2)와 항염증(nuclear factor kappa-light-chain-enhancer of activated B cells; NF-κB) 등에 관여하는 전사 인자와 vitagenes과의 상관관계 연구를 통해 명확한 항산화 및 면역 작용에 관한 연구가 지속해서 필요하다(Surai, 2020) (Fig. 5).

가금 생산과정에서 사육 환경, 기후 변화, 대사 작용, 육종 개량 등에 따른 내외적 산화 스트레스의 증가는 면역 및 생산성 저하로 심각한 경제적 손실과 더불어 동물복지에도 많은 문제를 유발한다. 향후 식물 유래 천연 생리활성 물질의 개발과 산업적 적용은 친환경 가금 산업의 발전에 매우 중요한 역할을 할 것으로 전망되며 이에 관한 지속적 연구와 투자가 필요하다.

적 요

가금은 육량과 산란율 등 생산성에서 현저한 개선이 이루어졌지만, 그 이면에는 육종 및 사육 환경변화 등에 따른 내외적 요인들에 의한 체 조직의 산화 스트레스가 건강에 심각한 문제를 유발한다. 따라서 면역, 질병, 번식 및 생산물의 품질에 영향을 미치는 체 조직의 과도한 활성산소(reactive oxygen species, ROS)를 완화하는 항산화제 개발은 가금 영양에서 중요하다. 가금에서 산화 스트레스 대응 방법으로 효소적 및 비효소적 항산화 방어체계가 배아 발생 및 성장 단계에서 급격하게 발달한다. 최근 가금 사양에서 산화 스트레스가 다발하는 시기에 항산화제의 사용이 점증하고 있다. 항산화제로서 vitamin(A, C 및 E), mineral(Se, Zn 및 Cu), phytochemicals(polyphenols, carotenoids 등) 등 다양한 종류가 있으며, 이들 화합물의 ROS 소거 작용은 킬레이트화, oxygen quencher, 산화 효소 억제, 또는 항산화 효소 발현을 촉진하여 산화 스트레스를 방어한다. 비타민 A와 E는 효과적 oxygen quencher로서 체 조직에서 chain-breaking 산화 억제제로 작용한다. Vitamin C는 vitamin E와 상호작용으로 불안정한 화합물이 ROS가 되는 반응을 억제한다. 무기물 중 Se는 Se-glutathione peroxidase, Zn과 Cu는 Cu/Zn-superoxide dismutase 구성 성분으로서 핵심적인 항산화 작용을 한다. 식물성 polyphenolics 성분 중 phenolic acids와 flavonoids는 ROS 소거력이 우수한 화합물로서 베리, 허브, 녹차 등에 존재하며 항산화제로서 이용 가능성이 크다. 특히 thymol과 carvacrol을 함유한 생리활성 오일은 우수한 항산화 작용으로 가금 산업에 성공적으로 사용되고 있다. Carotenoids는 체 조직에 축적되어 발색되는 식물성 색소로서 xanthophyll(lutein, xanthin 등) 계열은 난황과 피부 착색 효과와 항산화 작용으로 가금 생산물의 품질을 증가하는 목적으로 사용되고 있다. 식물성 천연 항산화 소재에 관한 많은 연구가 진행되어, 일부는 성공적으로 사용하고 있지만 생체 이용률이 낮고 첨가 용량과 화학적 안정성에 따라 아직 널리 이용되지는 않는다. 최근 phytochemicals의 생체 이용률을 높이기 위해 캡슐화, 리포솜, 나노 입자로 제조 기술이 발달하고 있다. 또한 식물성 소재가 항산화 및 면역 작용에 미치는 유전자 발현 연구를 통해 가장 효과적인 생리활성 물질에 관한 탐색 연구도 지속해서 진행되고 있다. 가금에서 많은 내외적 요인들이 산화 스트레스를 유발하여 동물 건강과 복지에 심각한 문제를 유발함으로 항산화제 개발과 적용은 친환경 가금 산업에 매우 중요하다.

사 사

본 연구 수행 과정에서 경상국립대학교 동물생명산업센터(RAIC)의 부분적 지원에 감사드립니다.

REFERENCES

1.

Abd El-Wahab A, Radko D, Kamphues J 2013 High dietary levels of biotin and zinc to improve health of foot pads in broilers exposed experimentally to litter with critical moisture content. Poult Sci 92(7):1774-1782.

2.

Acosta MJ, Vazquez Fonseca L, Desbats MA, Cerqua C, Zordan R, Trevisson E, Salviati L 2016 Coenzyme Q biosynthesis in health and disease. Biochim Biophys Acta 1857:1079-1085.

3.

Aebi H 1984 Catalase in vitro. Methods Enzymology 105:121-126.

4.

Al-Ruwad SH, Attia AI, Monem UMA, Abdel-Maksoud A, Thagfan FA, Alqahtani HA, Alkahtani AM, Salah AS, Reda FM 2024 Dietary supplementation with copper nanoparticles enhances broiler performance by improving growth, immunity, digestive enzymes, and gut microbiota. Poult Sci 103(10):104026.

5.

Alo ET, Daramola JO, Wheto M, Oke OE 2024 Impact of broiler breeder hens’ age and egg storage on egg quality, embryonic development, and hatching traits of FUNAAB-alpha chickens. Poult Sci 103(2):103313.

6.

Baszczyk A, Augustyniak A, Skolimowski J 2013 Ethoxyquin: an antioxidant used in animal feed. Int J Food Sci 2013:585931.

7.

Berendschot TT, Goldbohm RA, Klöpping WA, van de Kraats J, van Norel J, van Norren D 2000 Influence of lutein supplementation on macular pigment, assessed with two objective techniques. Invest Ophthalmol Vis Sci 41(11):3322-3326.

8.

Boonlao N, Ruktanonchai UR, Anal AK 2022 Enhancing bioaccessibility and bioavailability of carotenoids using emulsion-based delivery systems. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces 209(Part 2):112211.

9.

Bun SD, Guo YM, Guo FC, Ji FJ, Cao H 2011 Influence of organic zinc supplementation on the antioxidant status and immune responses of broilers challenged with Eimeria tenella. Poult Sci 90(8):1220-1226.

10.

Burri BJ, La Frano, MR, Zhu C 2016 Absorption, metabolism, and functions of β-cryptoxanthin. Nutr Rev 11:74(2):69-82.

11.

Circu ML, Aw TY 2012 Intestinal redox biology and oxidative stress. Semin Cell Dev Biol 23(7):729-737.

12.

Couto N, Wood J, Barber J 2016 The role of glutathione reductase and related enzymes on cellular redox homoeostasis network. Free Radic Biol Med 95:27-42.

13.

Cowan MM 1999 Plant products as antimicrobial agents. Clin Microbiol Rev 12(4):564-582.

14.

Farahat M, Abdallah F, Abdel-Hamid T, Hernandez-Santana A 2016 Effect of supplementing broiler chicken diets with green tea extract on the growth performance, lipid profile, antioxidant status and immune response. Br Poult Sci 57(5):714-722.

15.

FEEDAP 2018 EFSA panel on additives and products or substances used in animal feed; Safety and efficacy of butylated hydroxyanisole (BHA) as a feed additive for all animal species. EFSA J 16(3):e05215.

16.

Gao J, Lin H, Wang XJ, Song ZG, Jiao HC 2010 Vitamin E supplementation alleviates the oxidative stress induced by dexamethasone treatment and improves meat quality in broiler chickens. Poult Sci 89(2):318-327.

17.

Gebregziabher BS, Gebremeskel H, Debesa B, Ayalneh D, Mitiku T, Wendwessen T, Habtemariam E, Nur S, Getachew T 2023 Carotenoids: dietary sources, health functions, biofortification, marketing trend and affecting factors. A review. J Agri Food Res 14:100834.

18.

Geng AL, Guo YM, Yang Y 2004 Reduction of ascites mortality in broilers by coenzyme Q10. Poult Sci 83:1587-1593.

19.

Ghosh S, Chatterjee PN, Maity A, Mukherjee J, Batabyal S, Chatterjee JK 2020 Effect of supplementing pomegranate peel infusion on body growth, feed efficiency, biochemical metabolites and antioxidant status of broiler chicken. Trop Anim Health Prod 52(6):3899-3905.

20.

Goliomytis M, Tsoureki D, Simitzis PE, Charismiadou MA, Hager-Theodorides AL, Deligeorgis SG 2014 The effects of quercetin dietary supplementation on broiler growth performance, meat quality, and oxidative stability. Poult Sci 93(8):1957-1962.

21.

Halliwell B, Gutteridge JM 1990 The antioxidants of human extracellular fluids. Arch Biochem Biophys 280(1):1-8.

22.

Hayes JD, Flanagan JU, Jowsey IR 2005 Glutathione transferases. Annu Rev Pharmacol Toxicol 45:51-88.

23.

He B, Bortoluzzi C, King WD, Graugnard D, Dawson KA, Applegate TJ 2019 Zinc source influences the gene expression of zinc transporters in jejunum and cecal tonsils during broiler challenge with Eimeria maxima and Clostridium perfringens. Poult Sci 98(3):1146-1152.

24.

Hu Y, Lin Q, Zhao H, Li S, Sang S, McClements DJ, Long J, Jin Z, Wang J, Qiu C 2023 Bioaccessibility and bioavailability of phytochemicals: influencing factors, improvements, and evaluations. Food Hydrocolloids 135:108165

25.

Huang YL, Lu L, Luo XG, Liu B 2007 An optimal dietary zinc level of broiler chicks fed a corn-soybean meal diet. Poult Sci 86(12):2582-2589.

26.

Jadhav JT, Kengar S 2016 Influence of hydrogen peroxide induced oxidative stress on survival rate of early chick embryo development. Int J Bioassays 5(6):4603-4606.

27.

James AM, Smith RA, Murphy MP. 2004. Antioxidant and prooxidant properties of mitochondrial coenzyme Q. Arch Biochem Biophys 423:47-56.

28.

Jang I, Ko Y, Kang S, Kim S, Song M. Cho K, Ham J, Sohn S 2014a Effects of dietary lutein sources on lutein-enriched egg production and hepatic antioxidant system in laying hens. J Poult Sci 51:58-65.

29.

Jang I, Ko Y, Kang S, Lee C 2007a Effect of a commercial essential oil on growth performance, digestive enzyme activity and intestinal microflora population in broiler chickens. Anim Feed Sci Tech 134:304-315.

30.

Jang I, Ko Y, Moon Y, Sohn S 2014b Effects of vitamin C or E on the pro-inflammatory cytokines, heat shock protein 70 and antioxidant status in broiler chicks under summer conditions. Asian Aust J Anim Sci 27(5):749-756.

31.

Jang I, Ko Y, Moon Y, Sohn S 2007b Effect of dietary supplementation of ground grape seed on growth performance and antioxidant status in the intestine and liver in broiler chicken. Kor Poult Sci 34(1):1-8.

32.

Jeon D, Kim M, Yoon I, Ahn H, Sohn S, Jang I 2019 Effects of dietary zinc supplements on the antioxidant indicators and the expression of zinc transport genes in Korean native chicks. Kor J Poult Sci 46(3):161-171.

33.

Jones BL, Porter JW 1999 Biosynthesis of carotenes in higher plants. CRC Crit Rev Plant Sci 3:295-324.

34.

Julian RJ 2005 Production and growth related disorders and other metabolic diseases of poultry - A review. Vet J 169(3):350-369.

35.

Kamboh AA, Hang SG, Bakhetgul M, Zhu WY 2013 Effects of genistein and hesperidin on biomarkers of heat stress in broilers under persistent summer stress. Poult Sci 92(9):2411-2418.

36.

Kim DW, Kim JH, Kang GH, Kang HK, Park SB, Part JH, Bang HT, Kim MJ, Na JC, Chae HS, Choi HC, Suh OS, Kim SH, Kang CW 2010 Studies for antibiotic free chicken production using water extracts from artemisia capillaris and camellia sinensis. Kor J Food Sci Ani Resour 30(6):975-988.

37.

Kim M, Lee J, Jang I 2021 Post-hatching development of digestive organs, intestinal digestive enzymes and hepatic antioxidant defense system in white leghorn chicks. Kor J Poult Sci 48(1):31-39.

38.

Kirkpinar F, Unlu HB, Serdaroglu M, Turp GY 2014 Effects of dietary oregano and garlic essential oils on carcass characteristics, meat composition, colour, pH and sensory quality of broiler meat. Br Poult Sci 55(2):157-166.

39.

Kpomasse CC, Oke OE, Houndonougbo FM, Tona K 2021 Broiler production challenges in the tropics: a review. Vet Med Sci 7(3):831-842.

40.

Krizman PJ, Smidovnik A, Wondra AG, Krizman M, Prosek M 2013 Effects of dietary CoQ10 and α-lipoic acid on CoQ10 levels in plasma and tissues of eggs laying hens. J Biomed Sci Eng 6(2):185-191.

41.

Laudicina DC and Marnett LJ. 1990. Enhancement of hydroperoxide-dependent lipid peroxidation in rat liver microsomes by ascorbic acid. Archives Biochem Biophys 278(1):73-80.

42.

Li B Ahmed F, Bernstein PS 2010 Studies on the singlet oxygen scavenging mechanism of human macular pigment. Arch Biochem Biophys 504(1):56-60.

43.

Li W, Chen H, Xu B, Wang Y, Zhang C, Cao Y, Xing X 2023 Research progress on classification, sources and functions of dietary polyphenols for prevention and treatment of chronic diseases. J Future Foods 3(4):289-305.

44.

Livrea MA, Tesorire L, Friesleben HJ 1996 Vitamin A as an antioxidant. Pages 371-405 In: Handbook of Antioxidants. Marcel Dekker, New York, USA.

45.

Mamatha BS, Baskaran V 2011 Effect of micellar lipids, dietary fiber and β-carotene on lutein bioavailability in aged rats with lutein deficiency. Nutrition 27:960-966.

46.

Maoka T 2019 Carotenoids as natural functional pigments. J Nat Med 74(1):1-16.

47.

Marisiddaiah R, Baskaran V 2009 ioefficacy of β-carotene is improved in rats after solubilized as equimolar dose of β-carotene and lutein in phospholipid-mixed micelles. Nutr Res 29(8):588-595.

48.

Maurya VK, Singh J, Ranjan V, Gothandam KM, Bohn T, Pareek S 2020 Factors affecting the fate of β-carotene in the human gastrointestinal tract: a narrative review. Int J Vitam Nutr Res 92(5-6):385-405.

49.

Meng Q, Li J, Wang C, Shan A 2023. Biological function of resveratrol and its application in animal production: a review. J Anim Sci Biotech 14:25.

50.

Milinkovic-Tur S, Aladrovi J, Ljubic B, Poljicak-Milas N 2009 Age-related antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in heart muscles of broiler chickens fed with supplementary organic selenium. Veterinarski Arhiv 79(5):481-489.

51.

Mishra B, Jha R 2019 Oxidative stress in the poultry gut: potential Challenges and Interventions. Front Vet Sci 6:60.

52.

Molteni C, Motta CL, Valoppi F 2022 Improving the bioaccessibility and bioavailability of carotenoids by means of nanostructured delivery systems: a comprehensive review. Antioxidants (Basel) 11(10):1931.

53.

Moon Y, Jang I 2022 Effects of coenzyme Q10 on the antioxidant system in blood and liver of laying hens. Kor J Poult Sci 49(2):115-124.

54.

Mujahid A, Akiba Y, Warden CH, Toyomizu M 2007 Sequential changes in superoxide production, anion carriers and substrate oxidation in skeletal muscle mitochondria of heat-stressed chickens. FEBS Lett 581(18):3461-3467.

55.

Naidoo V, McGaw LJ, Bisschop SP, Duncan N, Eloff JN 2008 The value of plant extracts with antioxidant activity in attenuating coccidiosis in broiler chickens. Vet Parasitol 153(3-4):214-219.

56.

Nam G, Lee Y, Sohn S, Jang I 2024 Early development of digestive organs, intestinal microvilli digestive enzymes, and hepatic antioxidant enzymes after hatching in Korean native chicks. Kor J Poult Sci 51(2):107-116.

57.

National Research Council 1994 Nutrient Requirement of Poultry. 9th. rev ed. National Academic Press, Washington DC, USA.

58.

Navidshad B, Jabbari S, Mirzael Aghjeh Gheshlagh F 2016 The new progresses in Zn requirements of poultry. Iranian J App Anim Sci 6(4):763-767.

59.

Nawab A, Li G, Liu W, Lan R, Wu J, Zhao Y, Kang K, Kieser B, Sun C, Tang S, Xiao M, An L 2019 Effect of dietary curcumin on the antioxidant status of laying hens under high-temperature condition. J Therm Biol 86:102449.

60.

Ognik K, Sembratowicz I, Cholewińska E, Jankowski J, Kozłowski K, Juśkiewicz J, Zduńczyk Z 2018 The effect of administration of copper nanoparticles to chickens in their drinking water on the immune and antioxidant status of the blood. Anim Sci J 89(3):579-588.

61.

Oke OE, Akosile OA, Oni AI, Opowoye OI, Ishola CA, Adebiyi JO, Odeyemi AJ, Adjei-Mensah B, Uyanga VA, Abioja MO 2024 Oxidative stress in poultry production. Poult Sci 103(9):104003.

62.

Oni AI, Adeleye OO, Adebowale TO, Oke OE 2024 The role of phytogenic feed additives in stress mitigation in broiler chickens. J Anim Physiol Anim Nutr (Berl) 108(1):81-98.

63.

Panda AK, Cherian G 2014 Role of vitamin E in counteracting oxidative stress in poultry. J Poult Sci 51:109-117.

64.

Papadopoulos GA, Chalvatzi S, Kopecky J, Arsenos G, Fortomaris PD 2019 Effects of dietary fat source on lutein, zeaxanthin and total carotenoids content of the egg yolk in laying hens during the early laying period. Br Poult Sci 60(4):431-438.

65.

Park JH, Kweon GR 2013 Clinical applications of antioxidants. Hanyang Med Rev 33:130-136.

66.

Prasad AS 2014 Zinc: An antioxidant and anti-inflammatory agent: Role of zinc in degenerative disorders of aging. J Trace Elem Med Biol 28(4):364-371.

67.

Quiles JL, Ochoa JJ, Battino M, Gutierrez-Rios P, Nepomuceno EA, Frias ML, Huertas JR, Mataix J 2005 Life-long supplementation with a low dosage of coenzyme Q10 in the rat: effects on antioxidant status and DNA damage. Biofactors 25:73-86.

68.

Rafiei F, Khajali F 2021 Flavonoid antioxidants in chicken meat production: potential application and future trends. World’s Poult Sci J 77(2):347-361.

69.

Sahin K, Akdemir F, Orhan C, Tuzcu M, Hayirli A, Sahin N 2010 Effects of dietary resveratrol supplementation on egg production and antioxidant status. Poult Sci 89(6):1190-1198.

70.

Schwarz KB 1996 Oxidative stress during viral infection: a review. Free Radic Biol Med 21(5):641-649.

71.

Seomoon K and Jang I 2022 Application of plant flavonoids as natural antioxidants in poultry production. Kor J Poult Sci 49(4):211-220.

72.

Shen N, Wang T, Gan Q, Liu S, Wang L, Jin B 2022 Plant flavonoids: classification, distribution, biosynthesis, and antioxidant activity. Food Chem 383:132531.

73.

Shi J, Yu J, Pohorly JE, Kakuda Y 2003 Polyphenolics in grape seed - biochemistry and functionality. J Med Food 6(4):291-299.

74.

Sies H, Jones DP 2020 Reactive oxygen species (ROS) as pleiotropic physiological signaling agents. Nat Rev Mol Cell Biol 21(7):363-383.

75.

Soleimani AF, Zulkifli I, Omar AR, Raha AR 2011 Physiological responses of 3 chicken breeds to acute heat stress. Poult Sci 90(7):1435-1440.

76.

Song Y, Leonard SW, Traber MG, Ho E 2009 Zinc deficiency affects DNA damage, oxidative stress, antioxidant defenses, and DNA repair in rats. J Nutr 139(9):1626-1631.

77.

Surai PF 1999 Tissue-specific changes in the activities of antioxidant enzymes during the development of the chicken embryo. Br Poult Sci 40(3):397-405.

78.

Surai PF 2000 Effect of selenium and vitamin E content of the maternal diet on the antioxidant system of the yolk and the developing chick. Br Poult Sci 41(2):235-243.

79.

Surai PF 2002 Natural Antioxidants in Avian Nutrition and Reproduction. Nottingham University Press, Nottingham, UK.

80.

Surai PF 2020. Antioxidants in poultry nutrition and reproduction: an update. Antioxidants (Basel) 9(2):105.

81.

Surai PF, Kochish II 2019 Nutritional modulation of the antioxidant capacities in poultry: the case of selenium. Poult Sci. 98(10):4231-4239.

82.

Surai PF, Kochish II, Fisinin VI 2018 Glutathione peroxidase in poultry biology: Part 1. Classification and mechanism of action. World’s Poult Sci J 74(2):181-197.

83.

Surai PF, Kuklenko TV 2000 Effects of vitamin A on the antioxidant systems of the growing chicken. Asian-Aust J Anim Sci 13(9):1290-1295.

84.

Tan GY, Yang L, Fu YQ, Feng JH, Zhang MH 2010 Effects of different acute high ambient temperatures on function of hepatic mitochondrial respiration, antioxidative enzymes, and oxidative injury in broiler chickens. Poult Sci 89:115-122.

85.

Tang D, Wu J, Jiao H, Wang X, Zhao J, Lin H 2019 The development of antioxidant system in the intestinal tract of broiler chickens. Poult Sci 98(2):664-678.

86.

Teng H, Chen L 2019 Polyphenols and bioavailability: an update. Crit Rev Food Sci Nutr 59(13):2040-2051.

87.

Trabera MG and Stevens JF 2011 Vitamins C and E: beneficial effects from a mechanistic perspective. Free Radic Biol Med 51(5):1000-1013.

88.

Ulit’ko VE, Pykhtina LA, Erisanova OE, Gluyaeva LY 2017 Ecological and incubation properties of laying hens’ eggs when using antioxidant suppplement in the ration. Res J Pharm Biol Chem Sci 8(2):2077-2082.

89.

Xu X, Liu A, Hu S, Ares I, Martinez-Larranaga MR, Wang X, Martinez M, Anadon A, Martinez MA 2021 Synthetic phenolic antioxidants: metabolism, hazards and mechanism of action. Food Chem 353:129488.

90.

Yadav S, Teng PY, Santos TS, Gould RL, Craig SW, Fuller AL, Pazdro R, Kim WK 2020 The effects of different doses of curcumin compound on growth performance, antioxidant status, and gut health of broiler chickens challenged with Eimeria species. Poult Sci 99(11):5936-5945.

91.

Yang S, Wang LL, Shi Z, Ou X, Wang W, Chen X, Liu G 2018 Transcriptional profiling of liver tissues in chicken embryo at day 16 and 20 using RNA sequencing reveals differential antioxidant enzyme activity. PLoS One 13(2):e0192253.

92.

Yao Y, Peng G, Tian J, Qu X, Li C 2023 Zeaxanthin combined with tocopherol to improve the oxidative stability of chicken oil. J Oleo Sci 72(12):1063-1072.

93.

Yigit A, Panda A, Cherian G 2014 The avian embryo and its antioxidant defense system. World’s Poult Sci 70:563-570.

94.

Zhang L, Hou Y, Ma Z, Xie J, Fan J, Jiao Y, Wang F, Han Z, Liu S, Ma D 2023 Effect of oral vitamin A supplementation on host immune response to infectious bronchitis virus infection in specific pathogen-free chicken. Poult Sci 102(7):102701.

95.

Zhang LY, Peng QY, Liu YR, Ma QG, Zhang JY, Guo YP, Xue Z, Zhao LH 2021 Effects of oregano essential oil as an antibiotic growth promoter alternative on growth performance, antioxidant status, and intestinal health of broilers. Poult Sci 100(7):101163.

96.

Zhang Z, Wang Q, Zhang J, Li S, Wang X, Xu S 2012 Effects of oxidative stress on immunosuppression induced by selenium deficiency in chickens. Biol Trace Elem Res 149(3):352-361.

97.

Zheng H, Xu Y, Liehn EA, Rusu M 2024 Vitamin C as scavenger of reactive oxygen species during healing after myocardial infarction. Int J Mol Sci 25(6):3114.